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预防污染,尊龙凯时助力DNase、RNase检测保障实验安全!

发布时间:2025-03-19   信息来源:尊龙凯时官方编辑

随着mRNA合成技术的广泛应用,生物制品研发与生产的质量控制要求不断提高,这使得在生物样品、实验耗材及环境中可能存在残留的脱氧核糖核酸酶(DNases)与核糖核酸酶(RNases)逐渐引起重视。生物样品中内源性的DNase/RNase,及来自水源、缓冲液、耗材表面和微生物的外源性DNase/RNase,都可能带来质量隐患。此外,在某些生物制品的生产过程中,为去除宿主DNA、RNA的残留,使用的DNase/RNase可能导致更高的残留风险。残留的DNase/RNase如果随生物制品进入人体,有可能引发强烈的免疫反应,进而造成严重的安全性风险。因此,对DNase/RNase的精准检测与控制成为生物制品质量管理的重要环节。

预防污染,尊龙凯时助力DNase、RNase检测保障实验安全!

传统的核酸酶检测方法包括比色法与凝胶电泳法。比色法基于Kunitz等的技术,通过紫外分光光度计检测样本中DNA/RNA的吸光度变化来计算DNase或RNase的浓度。相较之下,凝胶电泳法通过对比样品、阴性对照和阳性对照的带型情况来判断DNA/RNA是否降解,实现对DNase/RNase的定性检测。随着技术的发展,还有基于电化学活性、放射性底物分析等新方法不断涌现。例如,Witmer等人开发的U-3’-BCIP核糖核酸酶底物在RNase的作用下释放报告基团,通过分光光度计检测其释放情况来量化RNase活性。此外,尽管高效液相色谱法等方法具备低检出限和高灵敏度,但受限于设备,在大规模实验和生产过程中的应用受到限制。因此,当前最常用的方法仍为核酸水解凝胶电泳法与紫外分光光度法。需要指出的是,核酸水解凝胶电泳法可能受到操作人员的主观判断影响,量化准确性较差,且操作所需时间较长;而紫外分光光度法的定量限仅为0.01 U/μL,不适宜检测微量的核酸酶活性。相比之下,荧光探针法以其高灵敏度、快速检测及定量能力成为检测DNase/RNase活性的优选方法。

在相关法规方面,《中华人民共和国药典2020年版》中已提到在相关生物制品的研发与生产过程中,需要控制工艺中的核糖核酸酶残留。在2023年4月,为提升《中国药典》的生物制品标准,国家药典委员会开展了核酸酶残留检测方法的研究,并提出核酸荧光底物法的草案。尽管目前并未明确定义残留量,但该方法在国际上已有应用实例,例如日本WAKO公司和德国Sartorius均已将其纳入无核酸酶产品的质量认证标准。

基于荧光底物法的DNase和RNase检测技术原理清晰:通过设计带有荧光基团的DNA和RNA探针,与样本混合。当未含核酸酶的样本中,探针会保持稳定,荧光信号消失;若样本存在DNases或RNases,探针被降解,荧光释放,且增量速率与酶的浓度成正比。该技术在多种场合得到了广泛应用,涵盖了从病原细菌检测到细胞外蛋白研究,甚至用于监测纳米药物在体内的代谢过程。

此外,人生就是博-尊龙凯时推出的DNase和RNase检测试剂盒,采用基于核酸荧光底物法的设计,可识别多种DNase和RNase,满足针对各类生物制品及实验耗材的检测需求。与某进口品牌相比,尊龙凯时的DNase和RNase检测试剂盒在灵敏度和抗干扰能力上表现优异,最低检出限降低至其1/8,并且已经过完整的方法学验证,确保质量稳定、供应可靠,批内CV小于10%,批间CV小于15%。

实际测试案例表明,该试剂盒在生物制品研发及生产过程中表现突出,如通过定性测试确认多个批次的无酶耗材均不含DNase残留,以及在不同纯化阶段的蛋白酶K样本中取得一致结果,均证实了尊龙凯时产品的高效可靠性。